美格生物重磅推出“VLP基因编辑系统”,攻克干细胞转染难题!
摘要:
不依赖病毒、不整合DNA、不需电转仪!这一次,中国科研终于站上了“非病毒基因递送”世界级舞台——一场颠覆传统的CRISPR递送革命,正在加速基因治疗和干细胞研究的临床转化。
“原代细胞,电转两次全死光。”
这是一位从事干细胞研究五年的科研人员在实验群里自嘲的留言。
精准、高效地将CRISPR系统递送进细胞,是整个基因编辑行业的“登月计划”——尤其面对免疫细胞、干细胞、原代细胞这些“难啃骨头”,传统病毒载体虽效率高,却因插入突变、免疫风险等问题,早已走到瓶颈。
就在此时,一个中国团队推出的非病毒纳米递送系统悄然上线,刷新了多项关键指标。
美格生物联合表观生物,正式发布CRISPR/Cas9-VLP(Virus-Like Particle)服务体系,以“病毒仿生+纳米工程”打造新一代递送平台——精准、安全、无需病毒包装,尤其适配干细胞与免疫细胞编辑,正在加速临床与科研的双向突破。
这项技术的核心,是将Cas9/sgRNA形成的RNP(核糖核蛋白复合物)“封装”进类病毒纳米颗粒(VLP)中,模拟天然病毒的膜融合能力,在不改变细胞基因组的前提下,实现精准敲除或修饰目标基因。
其工作流程如下:
利用HEK293T等细胞工厂高效生产VLP纳米颗粒;
每个颗粒精准载入一组Cas9/sgRNA RNP;
纳米颗粒通过膜融合方式进入目标细胞,释放RNP并启动基因编辑;
编辑窗口持续48-72小时后,RNP自动降解,避免脱靶或持续毒性。
图1. 实验流程
传统的基因编辑递送方式可分为三类:
病毒载体(如AAV、Lenti):高效但有整合风险、免疫原性强;
电转/脂质体转染:效率低、细胞毒性高,尤其对干细胞和原代细胞几乎无解;
RNP直接转染:精准但需要高端设备,兼容性差。
而CRISPR/Cas9-VLP递送系统正好补齐这三者缺陷:
✅ 无基因整合风险:仅递送蛋白和RNA,彻底避免DNA插入;
✅ 编辑效率飙升:优化sgRNA scaffold设计,命中效率可达90%以上;
✅ 超低细胞毒性:天然膜结构模拟病毒,细胞活力几乎不受影响;
✅ 简化实验操作:普通超净台操作即可,无需电转仪或病毒包装。
表1. BM-MSC中X蛋白敲除效果
在已发布的实验数据中,BM-MSC(骨髓间充质干细胞)中X蛋白的敲除效率高达85%以上。
图2. BM-MSC中X蛋白敲除效果
注:VLP系统成功敲除目标蛋白,细胞状态良好,存活率大幅优于传统方法
图3. BM-MSC中X蛋白敲除效果
注:系统已成功应用于T细胞、HSPCs、iPSCs等十余种高难度细胞类型,展现广谱适应能力
膜融合进入机制:避免胞吞路径引发的降解,提高RNP释放效率;
可控编辑窗口:RNP在细胞内48~72小时内降解,确保时空精准调控;
定制化配体设计:针对特定细胞(如免疫细胞、原代干细胞)优化表面靶向分子,提升转染专一性与效率。
1. 基因治疗:
支持CAR-T免疫细胞改造、遗传病功能修复等应用,减少使用病毒带来的安全争议。
2. 再生医学:
辅助干细胞的精准诱导与分化控制,为构建组织器官铺平道路。
3. 高难度细胞模型构建:
快速建立原代细胞、肿瘤组织细胞的稳定编辑模型,加速疾病机制研究。
在这个全球基因编辑加速临床化的时代,谁能在**“递送系统”**上实现自主可控和快速部署,谁就能抢占核心竞争力。
美格生物CRISPR/Cas9-VLP平台的推出,不只是一个技术升级,更可能是一场行业洗牌的前奏。
如果你正从事细胞治疗、干细胞研究、基因功能研究——
这套系统,可能就是你打破转染瓶颈的关键钥匙。
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